sábado, 6 de diciembre de 2014

Análisis del modulo de la capacitación.

Considero desde mi punto de vista que la microbiologia es una ciencia que día a día, avanza con los nuevos descubrimientos que se realizan con la tecnología, es cierto que aun no se sabe hasta donde puede llegar la capacidad del hombre por realizar estudios que sean innovadores cada vez mas, mas sin embrago debemos analizar que lo que nosotros hemos visto en este modulo de la capacitación es solamente una pequeña parte de lo que se conoce hoy en día de esta ciencia.
Desde mi perspectiva considero que todo lo que aprendimos y pudimos analizar en este semestre fue muy importante, ya que no solo nos servirá para aplicarlos en nuestras casas si no también, en un futuro ya que estos conocimientos sirven a aquellos que se dedicaran a la medicina, entre otras ramas de la ciencia.
Con este redactado haremos una breve pausa a nuestro recorrido de este aprendizaje, pero muy pronto volveremos con muchos mas cocimientos de laboratorio.

ESTAFILOCOCO MEDIO 110

Es un medio selectivo para el aislamiento y diferenciación presuntiva de estafilococos, en base a la producción de pigmentos, la fermentación de manitol y la hidrólisis de gelatina, a partir de alimentos y otras muestras.
En el medio de cultivo, el extracto de levadura y la tripteina aportan los nutrientes para el desarrollo de microorganismos, la gelatina es el sustrato de la enzima gelatinasa. La lactosa y el manitol son los hidratos de carbono fermentables. El cloruro de sodio, se encuentra en alta concentración, para inhibir el desarrollo de la flora acompañante, lográndose así un medio selectivo para el desarrollo de estos microorganismos. 
Fórmula (en gramos por litro)
Instrucciones
Extracto de levadura 
2.5
Suspender 149 g del medio en un litro de agua destilada. Reposar 5 minutos y mezclar calentando a ebullición durante 1 o 2 minutos. Esterilizar en autoclave durante 15 minutos a 121°C. Verter en placas y mezclar para dispersar el precipitado.

Tripteína
10.0
Gelatina
30.0
Lactosa
2.0
D-Manitol
10.0
Cloruro de sodio
75.0
Fosfato dipotásico
5.0
Agar
15.0
pH final: 7.0 ± 0.2


SIEMBRA
Directa, en superficie, por estriado o por extensión, mediante estrías continuas o por agotamiento.
La incubación es de 48 horas a 35-37ºC en aerobiosis.

RESULTADOS
Observar las características de las colonias y realizar las pruebas de identificación de microorganismos.
1. Fermentación de manitol: Agregar unas gotas de purpura de bromocresol a las zonas donde se encuentran las colonias sospechosas y en una zona d la placa donde no hay desarrollo bacteriano, comparar el color desarrollado entre las dos zonas.
Prueba positiva: cambio de color del indicador del medio en la zona de crecimiento bacteriano.
Prueba negativa: no hay diferencias de color entre las zonas de crecimiento bacteriano.

2. Hidrólisis de la gelatina: cubrir la placa 5ml de una solución saturada de sulfato de amonio y colocar en estufa, a 35-37ºC en aerobiosis.
Positiva. halo transparente alrededor de las colonias.
Negativa: Ausencia de este halo transparente.
Microorganismo
Pigmento
Fermentación de manitol
Hidrólisis de la gelatina
Prueba de la coagulasa
S. aureus ATCC 25923
+
+
+
+
S. aureus ATCC 6538
+
+
+
+
S. epidermidis ATCC 14990
-
-
+
-


PRACTICANDO CON EL ESTAFILOCOCO 110
*Lo que realizamos primero fue prepara la muestra que íbamos a estudiar (cebolla y cilantro de la cafetería).
*Trituramos la muestra en un mortero, y le colocamos gua destilada.
*Posteriormente esto se filtro con ayuda de una gasa y un embudo y se coloco en un tubo de ensaye.
*El medio ya se había prepara, así como se habían preparado todos los medios anteriormente.
*Después se inoculo la muestra en el medio por medio de estrías por agotamiento en toda la caja.

Después de haber dejado incubando nuestro material, al observarlo, notamos que habían pequeñas colonias, de color blanco incoloro, que tenían pequeñísimos halos en sus orillas, tenían una elevación convexa, y tenían forma circular. Por lo que podríamos deducir que la muestra fue negativa en la hidrólisis de la gelatina.

*También le realizamos la prueba de coagulasa y catalasa.

COAGULASA
*Tomamos plasma de sangre que ya había sido centrifugada, y posteriormente inoculamos la bacteria ahí con ayuda del asa, y después se llevo al baño maría, para después obtener la muestra y al estudiarla, nuestra prueba coagulasa salio negativa.

CATALASA
*Aquí colocamos una muestra de la colonia en un portaobjeto y después le agregamos una gota de agua oxigenada, para ver si era positiva, lo cual si ocurrió, y nos dio positiva.









AGAR MacConkey

El agar MacConkey es un medio de cultivo especifico para bacterias Gram negativas y cepas que fermenten la lactosa.
En el medio de cultivo, las peptonas, aportan los nutrientes necesarios para el desarrollo bacteriano, la lactosa es el hidrato de carbono fermentable, y la mezcla de sales biliares y el cristal violeta son los agentes selectivos que inhiben el desarrollo de gran parte de la flora Gram Positiva. Por fermentacion de la lactosa, disminuye el pH alrededor de la colonia. Esto produce un viraje de color del indicador de pH (rojo neutro), la absorcion en las colonias, y la precipitacion de las sales biliares. Los microorganismos no fermentadores de lactosa producen colonias incoloras.

Fórmula (en gramos por litro)

Instrucciones

  Peptona
17.0
Suspender 50 g del polvo por litro de agua destilada. Reposar 5 minutos y mezclar hasta uniformar. Calentar suavemente y hervir 1 a 2 minutos hasta disolver. Esterilizar en autoclave a 121°C durante 15 minutos.
  Pluripeptona
3.0
  Lactosa
10.0
  Mezcla de sales biliares
1.5
  Cloruro de sodio
5.0
  Agar
13.5
  Rojo neutro
0.03
  Cristal violeta
0.001
pH final: 7.1 ± 0.2

SIEMBRA
Sembrar en superficie, se recomienda realizar la técnica de pour place: sembrar 1ml de muestra y agregar aproximadamente 15ml del medio de cultivo fundido y enfriado a 45-50ºC.
Pero también puede realizarse por medio de estrías continuas y por agotamiento. Su incubación es de 18-48 horas a una temperatura de 35-37ºC.

 RESULTADOS

Microorganismos
Colonias
Escherichia coli ATCC 25922
Rojas con halo turbio
Klebsiella pneumoniae ATCC 700603
Rosadas mucosas
Salmonella typhimurium ATCC 14028
Incoloras, transparentes
Shigella flexneri ATCC 12022
Incoloras, transparentes
Proteus mirabilis ATCC 43071
Incoloras, transparentes
Enterococcus faecalis ATCC 29212
Diminutas, incoloras, opacas


Cuando los microorganismos fermentan la lactosa, tornan el medio a un color rosado-rojizo.
Cuando los microorganismo no la fermentan, aparecen colonias blancas o incoloras.







EMB (AGAR EOSINA Y AZUL DE METILENO)

Este medio es utilizado para el aislamiento selectivo de bacilos Gram Negativos de rápido desarrollo y escasas exigencias nutricionales. Permite el desarrollo de todas las especies de la familia Enterobacteriaceae. Este medio combina las formulas de Holt-Harris y Teague con la de Levine, para obtener un mejor rendimiento en el aislamiento selectivo de enterobacterias y otras especies de bacilos Gram negativos. La diferenciación entre organismos capaces de utilizar la lactosa y/o sacarosa, y aquellos son incapaces de hacerlo, esta dada por los indicadores eosina y azul de metileno, estos ejercen un efecto inhibitorio sobre muchas bacterias Gram positivas. Muchas cepas de Echerechia coli y Citrobacter, presentan un caracteristico brillo metalico.

Fórmula (en gramos por litro)
Instrucciones
  Peptona 
10.0
Suspender 36 g del polvo en un litro de agua destilada. Reposar 5 minutos; mezclar, calentando a ebullición durante 1 o 2 minutos hasta su disolución. Esterilizar en autoclave a no más de 121°C durante 15 minutos. Enfriar a 45°C y distribuir agitando suavemente.
  Lactosa
5.0
  Sacarosa
5.0
  Fosfato dipotásico
2.0
  Agar
13.5
  Eosina
0.4
  Azul de metileno
0.065
pH final: 7.2 ± 0.2



SIEMBRA
En superficie, por estriado a partir de un inoculo poco denso, para obtener colonias aisladas.
En profundidad, para favorecer el desarrollo de clamidosporas.
Puede llevarse acabo por medio de estrias continuas y tambien por agotamiento en la caja de petri.
Su incubacion es de 24 a 48 horas a una temperatura de 35-37ºC, en aerobiosis.

RESULTADOS

Características de medio y colonias.
Escherichia coli.
Citrobacter ssp.
C. Albicans Clamidosporas.
Salmonella, Shigella
Enterococcus
Acinetobacter
Lactosa.
+
+
-
-

Sacarosa.
+
+
-
-

Glucosa
+


+

Brillo metálico.
+
+
-


Centro grande y obscuro con periferia azulada o rosada.
+
+
-
-
-
Colonias rosadas y puntiformes.
-
-
+
-
.
Colonias puntiformes y transparente.
-
-
-
+
-

Colonias de azul lavanda.
-
-
-
-
+
Siembra en profundidad.


+
+
+
Siembra en superficie.
+
+
-
-
-
Bacterias Gram  -





 




















PRACTICANDO CON EL EMB
*Primero lo que hicimos fue pesar 3.6g del medio.
*Lo colocamos dentro del matraz para disolverlo con 100ml de agua y agitar vigorosamente.
*Después lo colocamos en la parrilla de calefacción y cuando rompa el hervor, debemos dejarlo así durante un minuto.
*Después se baja, y se sirve en caja de petri, y se espera a que se solidifique.



Aquí el medio sin inocular, presenta un color purpura oscuro.









Despues de haber sido incoulado el medio presentaba grietas 











UREA



En el medio de cultivo, la tripteina y la glucosa, aportan los nutrientes para el desarrollo de microorganismos. El cloruro de sodio mantiene el balance osmótico, y el rojo de fenol es el indicador de pH. Algunas bacterias hidrolizan la urea por medio de la enzima ureasa liberan
do amoniaco y dióxido de carbono. Estos productos alcalinizan el medio haciendo virar el rojo de fenol del amarillo al rojo. En este medio, la fermentación de la glucosa activa la enzima ureasa, acelerando la velocidad del metabolismo en aquellos organismos que hidrolizan lentamente la urea, como especies de Enterobacter o Klebsiella.



Fórmula (en gramos por litro)
Instrucciones
Tripteína
1.0
Suspender 24 g de polvo en 950 ml de agua destilada. Dejar reposar 2 minutos. Esterilizar en autoclave a 121°C durante 15 minutos. Enfriar a 50°C y agregar 50 ml de una solución de urea al 40% previamente esterilizada por filtración o cloroformo. Fraccionar en tubos de hemólisis y solidificar en pico de flauta con fondo profundo.
Glucosa
1.0
Cloruro de sodio
5.0
Fosfato monopotásico
2.0
Rojo de fenol
0.012
Agar
15.0
pH final: 6.8 ± 0.2





Se utiliza solamente para la detección de la actividad de la ureasa en especies del genero proteus que dan la prueba positiva después de una incubación de 8h. Si los nutrientes suministrados por el extracto de levadura se consumen antes de que la bacteria muestre un crecimiento aceptable no podrá determinarse con exactitud su capacidad de hidrolizar la urea. Si un microorganismo es capaz de hidrolizar la urea, pero no de utilizar amoniaco como fuente de nitrógeno, no se produce crecimiento y es posible observar un resultado falso negativo. No se recomienda para las bacterias con reacción de ureasa retardada. Sembrar el medio de cultivo con el cultivo puro de ensayo. Incubar 24 - 48 h a  35ºC, en ocasiones hasta 72 horas.

EJEMPLO DE ALGUNAS BACTERIAS
Microorganismo
Actividad ureásica
Color del medio
Proteus mirabilis ATCC 43071
Positiva
Rojo-Rosado
K. pneumoniae ATCC 700603
Positiva débil
Rojo-Rosado
Escherichia coli ATCC 25922
Negativa
Amarillo
S. flexneri ATCC 12022
Negativa
Amarillo
S. typhimurium ATCC 14028
Negativa
Amarillo


Nosotros practicamos con la urea también, y el resultado se mostrara a continuación.
Nuestra prueba es la que esta sujetándose, y fue negativa, por lo que los organismos no fueron capaces de fermentar la glucosa.